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Data download聚合酶鏈式反應(PCR)是一種廣泛應用于分子生物學、醫(yī)學診斷、食品安全和環(huán)境檢測等領域的核酸擴增技術。實時熒光定量PCR(Real-Time Quantitative PCR, qPCR)在傳統(tǒng)PCR的基礎上引入了熒光探針或染料,使得反應進程可以實時監(jiān)測。熔解溫度(Tm,Melting Temperature)作為核酸雙鏈解鏈過程中的一個關鍵參數(shù),能夠為引物特異性分析、突變檢測、產(chǎn)物鑒別等提供重要依據(jù)。
賽默飛科技生產(chǎn)的實時熒光定量PCR儀因其靈敏度、通量和數(shù)據(jù)分析能力,在多個實驗室中得到廣泛使用。本文將詳細介紹如何利用賽默飛實時熒光定量PCR儀進行Tm值的測定,并探討該過程的技術原理、實驗步驟及其應用價值。
熔解溫度(Tm值)是指雙鏈DNA變性為單鏈時的溫度,此時有50%的雙鏈DNA分子解鏈。Tm值受DNA序列長度、GC含量、離子濃度、DNA濃度等因素影響。測定Tm值對于以下方面具有重要意義:
引物和探針設計優(yōu)化:確保擴增的特異性和效率。
產(chǎn)物鑒別:通過熔解曲線識別不同的擴增產(chǎn)物或雜交探針的結合差異。
SNP和突變檢測:通過微小Tm值差異區(qū)分單核苷酸變異。
驗證擴增特異性:避免非特異性擴增對結果造成干擾。
賽默飛的實時PCR系統(tǒng)通常采用SYBR Green I或TaqMan探針等熒光標記方式來監(jiān)測DNA擴增。對于Tm值測定,多采用SYBR Green染料,其在雙鏈DNA存在時發(fā)出熒光,單鏈時熒光迅速降低。通過逐步升溫并記錄熒光變化,即可繪制出熔解曲線,進一步計算Tm值。
儀器通過以下機制測定Tm值:
熒光信號采集:在升溫過程中持續(xù)監(jiān)測SYBR Green的熒光變化。
熔解曲線分析:熒光信號隨溫度升高而下降,取導數(shù)(-dF/dT)后得到Tm峰值。
軟件計算與輸出:賽默飛的軟件可自動識別Tm峰值并輸出精確數(shù)據(jù)。
qPCR Master Mix(含SYBR Green)
引物(Forward/Reverse)
模板DNA
無RNA酶水
組分 | 體積(µL) |
---|---|
SYBR Green Mix | 10 |
上游引物(10 µM) | 0.8 |
下游引物(10 µM) | 0.8 |
模板DNA | 1 |
無RNA酶水 | 7.4 |
總計 | 20 |
初始變性:95℃,2分鐘
循環(huán)步驟(40個循環(huán)):
變性:95℃,15秒
退火/延伸:60℃,30秒
熔解曲線分析:
起始溫度:60℃
終止溫度:95℃
升溫速率:0.3~1℃/s,持續(xù)監(jiān)測熒光
實時監(jiān)測熒光并記錄擴增曲線
啟動熔解曲線模塊,導出-dF/dT vs. T圖形
Tm值對應曲線峰值所在溫度
單一Tm峰:代表擴增產(chǎn)物高度特異,說明實驗設計合理。
多重Tm峰:提示非特異擴增或引物二聚體存在,需優(yōu)化引物或反應條件。
Tm值偏低或偏高:可能為GC含量異常或體系緩沖液濃度偏差。
GC含量:GC對DNA穩(wěn)定性貢獻高,Tm值隨GC比例升高而提高。
引物長度:短引物Tm低,建議設計長度為18~25 bp。
鹽濃度:高離子強度能穩(wěn)定雙鏈DNA,提高Tm值。
DNA濃度:模板過多可能引起熔解曲線畸變。
染料濃度與兼容性:需選擇適合儀器和應用的染料。
通過引物或探針與目標序列結合后的Tm差異識別堿基突變。例如,某位點A→G突變可導致Tm值從78.5℃變?yōu)?6.3℃。
在多個候選引物中,通過測定Tm值及熔解曲線形態(tài)選出特異性強、產(chǎn)物純凈的引物組合。
針對擴增產(chǎn)物的Tm值進行比對,輔助確認擴增物是否為預期序列,尤其適用于無電泳分析條件下的高通量實驗。
引物設計軟件推薦使用Primer3、Oligo等,并確保Tm值相近(差值≤2℃)。
設定熔解曲線前應關閉擴增熒光,以避免干擾。
若發(fā)現(xiàn)Tm值波動較大,建議優(yōu)化Mg2?濃度、PCR循環(huán)參數(shù)或更換試劑批次。
對多重PCR反應,Tm值分布應盡量錯開,便于識別各目標產(chǎn)物。
通過實時熒光定量PCR儀測定Tm值,實驗人員可以獲得關于擴增特異性、產(chǎn)物性質(zhì)、突變識別等多方面的重要信息。賽默飛實時PCR平臺配合高分辨率熔解曲線分析功能,使得Tm值測定更為精準、穩(wěn)定。該技術在基因分型、病原檢測、轉(zhuǎn)基因篩查等場景中已得到廣泛應用。合理利用這一工具,能夠顯著提高實驗效率與數(shù)據(jù)質(zhì)量。
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